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標(biāo)準(zhǔn)比對 | GB4789.3-2025 食品微生物學(xué)檢驗(yàn) 大腸菌群計(jì)數(shù)

發(fā)布時(shí)間:2025-04-25    瀏覽次數(shù):19

根據(jù)《食品安全法》規(guī)定,國家衛(wèi)生健康委、市場監(jiān)管總局聯(lián)合印發(fā)2025年第2號公告,發(fā)布50項(xiàng)新食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)和9項(xiàng)修改單。其中微生物部分的標(biāo)準(zhǔn)包括:

(1)GB 4789.3《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品微生物學(xué)檢驗(yàn) 大腸菌群計(jì)數(shù)》(修訂)
(2)GB 4789.38《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品微生物學(xué)檢驗(yàn) 大腸埃希氏菌計(jì)數(shù)》(修訂)
(3)GB 4789.30《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品微生物學(xué)檢驗(yàn) 單核細(xì)胞增生李斯特氏菌檢驗(yàn)》(修訂)
(4)GB 4789.42《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品微生物學(xué)檢驗(yàn) 諾如病毒檢驗(yàn)》 (修訂)
(5)GB 31615.2《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品用菌種安全性評價(jià)程序》(制定)

本文旨在通過對比2025版與2016版大腸菌群檢驗(yàn)標(biāo)準(zhǔn),清晰闡述修訂的關(guān)鍵變更與發(fā)展趨勢,以期幫助相關(guān)從業(yè)人員深入理解并掌握食品檢驗(yàn)領(lǐng)域最新動(dòng)向。該標(biāo)準(zhǔn)將取代GB4789.3—2016《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品微生物學(xué)檢驗(yàn) 大腸菌群計(jì)數(shù)》,其修訂主要體現(xiàn)在五個(gè)方面。

1. 增加檢測方法選擇性(如均質(zhì)器應(yīng)用)
2. 完善特殊品類檢測方案(乳制品專項(xiàng))
3. 構(gòu)建分級判定體系(典型/非典型菌落)
4. 建立容錯(cuò)處理機(jī)制(空白對照異常)
5. 強(qiáng)化標(biāo)準(zhǔn)可操作性(新增示例說明)

一、變化亮點(diǎn)

1、標(biāo)準(zhǔn)框架調(diào)整

a. 檢驗(yàn)原理修訂
? 刪除原版“檢驗(yàn)原理”章節(jié)
? 保留MPN法(最可能數(shù)法)原理說明
? 移除平板計(jì)數(shù)法原理描述

2、術(shù)語體系優(yōu)化

? 細(xì)化“大腸菌群”等核心術(shù)語定義
? 刪除"最可能數(shù)(MPN)基于泊松分布..."的數(shù)學(xué)理論描述
? 強(qiáng)化操作相關(guān)術(shù)語的實(shí)踐指導(dǎo)性

3、實(shí)驗(yàn)設(shè)備與材料更新

a. 新增設(shè)備要求
? 30±1℃恒溫培養(yǎng)箱(針對乳制品檢測)
? 無菌接種環(huán)、無菌試管等耗材
? 大腸菌群計(jì)數(shù)測試片(4.8條款新增)

b. 設(shè)備參數(shù)調(diào)整
? 水浴箱溫度由“46±1℃”擴(kuò)展為“48±2℃”
? 取消菌落計(jì)數(shù)器的強(qiáng)制配備要求

4、檢測流程優(yōu)化

a. 培養(yǎng)時(shí)間調(diào)整
? BGLB肉湯培養(yǎng)時(shí)限由48±2h改為24-48h
? 復(fù)發(fā)酵實(shí)驗(yàn)建立24h/48h雙觀察節(jié)點(diǎn)

b. 操作方法改進(jìn)
? 液體樣品增加均質(zhì)器振搖選項(xiàng);
? 取消稀釋過程"換用吸管吹打"的硬性規(guī)定;
? 規(guī)范初發(fā)酵實(shí)驗(yàn)操作表述。

5、大腸菌群平板法接種與培養(yǎng)的修改

a. 培養(yǎng)基處理
? 培養(yǎng)基保溫溫度同步調(diào)整為48±2℃

b. 乳制品檢測規(guī)范
? 明確乳制品采用30±1℃培養(yǎng)(18-24h)
? 基于研究數(shù)據(jù)佐證溫度調(diào)整的科學(xué)性

c. 菌落判定標(biāo)準(zhǔn)
? 細(xì)化典型/非典型菌落形態(tài)學(xué)特征
? 新增15-150CFU雙稀釋度處理規(guī)則(參照附錄D)

6、結(jié)果處理更完善

a. 計(jì)算規(guī)則
? 細(xì)化空白對照異常處理方案
? 新增多場景計(jì)算結(jié)果修約規(guī)范

b. 報(bào)告標(biāo)準(zhǔn)化
? 增加示例說明不同檢測情形的報(bào)告方式
? 強(qiáng)化與附錄D的協(xié)同應(yīng)用機(jī)制

二、詳細(xì)對比

1、范圍

本標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定了食品中大腸菌群(Coliforms)計(jì)數(shù)的方法。 
本標(biāo)準(zhǔn)第一法適用于大腸菌群含量較低的食品中大腸菌群的計(jì)數(shù),第二法適用于大腸菌群含量較高的食品中大腸菌群的計(jì)數(shù)。

2、術(shù)語和定義

2.1 大腸菌群 Coliforms

在一定培養(yǎng)條件下能發(fā)酵乳糖、產(chǎn)酸產(chǎn)氣的需氧和兼性厭氧革蘭氏陰性無芽孢桿菌。

2.2 MPN法 Most Probable Number(MPN) Technique(替換最可能數(shù))

MPN法是統(tǒng)計(jì)學(xué)和微生物學(xué)結(jié)合的一種定量檢測法。待測樣品經(jīng)系列稀釋并培養(yǎng)后,根據(jù)其未生長的最低稀釋度與生長的最高稀釋度,應(yīng)用統(tǒng)計(jì)學(xué)概率論推算出待測樣品中大腸菌群的最可能數(shù)。

(原標(biāo)準(zhǔn)內(nèi)容)

最可能數(shù) Mostprobablenumber;MPN2.2
基于泊松分布的一種間接計(jì)數(shù)方法。

(刪除了以下內(nèi)容)

3、檢驗(yàn)原理

3.1  MPN 法
MPN法是統(tǒng)計(jì)學(xué)和微生物學(xué)結(jié)合的一種定量檢測法。待測樣品經(jīng)系列稀釋并培養(yǎng)后,根據(jù)其未生長的最低稀釋度與生長的最高稀釋度,應(yīng)用統(tǒng)計(jì)學(xué)概率論推算出待測樣品中大腸菌群的最大可能數(shù)。3.2  平板計(jì)數(shù)法大腸菌群在固體培養(yǎng)基中發(fā)酵乳糖產(chǎn)酸,在指示劑的作用下形成可計(jì)數(shù)的紅色或紫色,帶有或不帶有沉淀環(huán)的菌落。

3.2  平板計(jì)數(shù)法
大腸菌群在固體培養(yǎng)基中發(fā)酵乳糖產(chǎn)酸,在指示劑的作用下形成可計(jì)數(shù)的紅色或紫色,帶有或不帶有沉淀環(huán)的菌落。

3、設(shè)備和材料

除微生物實(shí)驗(yàn)室常規(guī)滅菌及培養(yǎng)設(shè)備外,其他設(shè)備和材料如下:
3.1 恒溫培養(yǎng)箱:36 ℃ ±1 ℃、30 ℃ ±1 ℃(新增)。 
3.2 冰箱:2 ℃~5 ℃ 。 
3.3 恒溫水浴箱:48 ℃±2 ℃ 。(原標(biāo)準(zhǔn)46 ℃±1 ℃) 
3.4 天平:感量 0.1 g。
3.5 均質(zhì)器及無菌均質(zhì)袋、均質(zhì)杯,振蕩器。 
3.6 無菌試管:15 mm×150 mm、18 mm×100 mm 或其他合適規(guī)格,以及小倒管(杜氏管)。(新增)
3.7 無菌吸管:1 mL(具 0.01 mL 刻度)、2 mL(具 0.02 mL 刻度)(新增)5mL(具 0.05 mL刻度)(新增)、10 mL(具 0.1 mL 刻度)或微量移液器及無菌吸頭。 
3.8 無菌錐形瓶:容量 500 mL。 
3.9 無菌培養(yǎng)皿:直徑 90 mm。 
3.10 pH 計(jì)或精密 pH 試紙。 
3.11 無菌接種環(huán):10 μL(直徑約 3 mm)(新增)
3.12 放大鏡(新增)或菌落計(jì)數(shù)器

4、培養(yǎng)基和試劑

4.1 磷酸鹽緩沖液:見 A.1。(原標(biāo)準(zhǔn)無菌磷酸鹽緩沖液)
4.2 生理鹽水:見 A.2。(原標(biāo)準(zhǔn)無菌生理鹽水)
4.3 月桂基硫酸鹽胰蛋白胨(LST)肉湯:見 A.3。
4.4 煌綠乳糖膽鹽(BGLB)肉湯:見 A.4。
4.5 結(jié)晶紫中性紅膽鹽瓊脂(VRBA):見 A.5。
4.6 1 mol/L NaOH:見 A.6。
4.7 1 mol/L HCl:見 A.7。
4.8 大腸菌群計(jì)數(shù)測試片(應(yīng)以發(fā)酵乳糖產(chǎn)酸產(chǎn)氣為陽性結(jié)果判斷依據(jù),且性能符合GB4789.28中相關(guān)培養(yǎng)基的質(zhì)量要求)。 (新增)

第一法 大腸菌群MPN 計(jì)數(shù)法

5、檢驗(yàn)程序

大腸菌群MPN計(jì)數(shù)的檢驗(yàn)程序見圖1。

大腸菌群MPN計(jì)數(shù)法檢驗(yàn)程序檢驗(yàn)程序

圖1 大腸菌群MPN計(jì)數(shù)法檢驗(yàn)程序檢驗(yàn)程序

主要修改點(diǎn)為BGLB肉湯培養(yǎng)時(shí)間由48 h±1 h改為24h~48h。

6、操作步驟

6.1 樣品的稀釋

6.1.1 固體和半固體樣品:無菌操作稱取 25 g 樣品,放入盛有 225 mL 磷酸鹽緩沖液或生理鹽水的無菌均質(zhì)杯內(nèi),8 000 r/min~10 000 r/min 均質(zhì) 1 min~2 min;或放入盛有 225 mL 磷酸鹽緩沖液或生理鹽水的無菌均質(zhì)袋中,用拍擊式均質(zhì)器拍打 1 min~2 min,制成 1:10 的樣品勻液。

6.1.2 液體樣品:用無菌吸管吸取 25 mL 樣品置于盛有 225 mL 磷酸鹽緩沖液或生理鹽水的無菌錐形瓶(瓶內(nèi)預(yù)置適當(dāng)數(shù)量的無菌玻璃珠),或放入盛有225mL磷酸鹽緩沖液或生理鹽水的無菌均質(zhì)袋中,用拍擊式均質(zhì)器拍打1min~2min,制成 1∶10的樣品勻液。當(dāng)樣品不適宜進(jìn)行體積取樣時(shí),按6.1.1操作。

6.1.3 必要時(shí)用 1 mol/L NaOH或 1 mol/LHCl,調(diào)節(jié)樣品勻液的pH至6.5~7.5 之間。(調(diào)整了文字順序,原標(biāo)準(zhǔn)內(nèi)容樣品勻液的pH應(yīng)在6.5~7.5之間,必要時(shí)分別用1mol/L NaOH 或1mol/L HCl調(diào)節(jié)。)

6.1.4 用1mL 無菌吸管或微量移液器吸取 1:10 樣品勻液 1 mL,沿管壁緩緩注入裝有 9 mL 磷酸鹽緩沖液或生理鹽水的無菌試管中(注意吸管或吸頭尖端不要觸及稀釋液面),將試管在振蕩器上振蕩混勻或換用1支1mL無菌吸管反復(fù)吹打使其混合均勻,制成 1:100 的樣品勻液。

6.1.5 根據(jù)對樣品污染狀況的估計(jì),參照6.1.4的操作,依次制成 10 倍遞增系列稀釋樣品勻液。每遞增稀釋 1 次,換用 1 支1mL無菌吸管或吸頭。從制備樣品勻液至樣品接種完畢,全過程不得超過 15 min。

6.2 初發(fā)酵試驗(yàn)

6.2.1 每個(gè)樣品,選擇 3 個(gè)適宜的連續(xù)稀釋度的樣品勻液(液體樣品可以選擇原液),每個(gè)稀釋度接種 3 管 LST 肉湯,每管接種 1mL(如接種量超過 1 mL,則用雙料 LST 肉湯)。從制備樣品勻液開始至接種到 LST肉湯完畢,全過程不得超過15min。
將已接種樣品的LST肉湯管置于 36℃±1℃培養(yǎng)24h±2h,檢查產(chǎn)氣情況。24h±2h小倒管或產(chǎn)氣收集裝置內(nèi)有氣泡產(chǎn)生,或輕輕振搖 LST肉湯管可見試管內(nèi)有細(xì)密氣泡不斷上升者,判斷為產(chǎn)氣,產(chǎn)氣者進(jìn)行復(fù)發(fā)酵試驗(yàn)(確認(rèn)試驗(yàn))。如未產(chǎn)氣則繼續(xù)培養(yǎng)至 48h±2h再檢查產(chǎn)氣情況,產(chǎn)氣者進(jìn)行復(fù)發(fā)酵試驗(yàn);培養(yǎng)至48h±2h,仍未產(chǎn)氣者判斷為大腸菌群陰性。若培養(yǎng)至 48h±2h,所有 LST肉湯管均未產(chǎn)氣,按照附錄 B中的 MPN檢索表,報(bào)告每克(毫升)樣品中大腸菌群的 MPN值,以 MPN/g(mL)表示 。

6.3  復(fù)發(fā)酵試驗(yàn)(確認(rèn)試驗(yàn))(原標(biāo)準(zhǔn)證實(shí)試驗(yàn))

輕輕振搖各產(chǎn)氣的LST肉湯管,分別用接種環(huán)取培養(yǎng)物1環(huán),轉(zhuǎn)種于BGLB肉湯管中,36℃±1℃培養(yǎng)24h±2h,檢查產(chǎn)氣情況,產(chǎn)氣者判斷為大腸菌群陽性;未產(chǎn)氣者則繼續(xù)培養(yǎng)至 48h±2h再檢查產(chǎn)氣情況,產(chǎn)氣者判斷為大腸菌群陽性,仍未產(chǎn)氣者判斷為大腸菌群陰性。(原標(biāo)準(zhǔn)36℃±1℃培養(yǎng)48h±2h,觀察產(chǎn)氣情況。產(chǎn)氣者,計(jì)為大腸菌群陽性管。)

7、結(jié)果與報(bào)告(原標(biāo)準(zhǔn)大腸菌群最可能數(shù)(MPN)的報(bào)告

根據(jù)復(fù)發(fā)酵試驗(yàn)中3個(gè)適宜連續(xù)稀釋度中大腸菌群陽性的管數(shù)(如連續(xù)的稀釋度超過3個(gè),根據(jù)附錄C確定最適的3個(gè)連續(xù)稀釋度),按照附錄B中的MPN檢索表,報(bào)告每克(毫升)樣品中大腸菌群的MPN值,以MPN/g(mL)表示。(原標(biāo)準(zhǔn)按7.3確證的大腸菌群BGLB陽性管數(shù),檢索MPN 表(見附錄B),報(bào)告每g(mL)樣品中大腸菌群的MPN 值。)

第二法 大腸菌群平板計(jì)數(shù)法

8、檢驗(yàn)程序

大腸菌群平板計(jì)數(shù)法的檢驗(yàn)程序見圖 2。

大腸菌群MPN計(jì)數(shù)法檢驗(yàn)程序

圖2 大腸菌群MPN計(jì)數(shù)法檢驗(yàn)程序

檢驗(yàn)程序主要修改點(diǎn)為新增大腸菌群測試片及新增乳及乳制品的培養(yǎng)溫度要求。

9、操作步驟

9.1 樣品的稀釋

按 6.1 進(jìn)行。

9.2 接種與培養(yǎng)

9.2.1 根據(jù)對樣品污染狀況的估計(jì),選取 2個(gè)~3個(gè)適宜的連續(xù)稀釋度的樣品勻液(液體樣品可以選擇原液) ,每個(gè)稀釋度接種2個(gè)無菌培養(yǎng)皿,每皿1mL。同時(shí)取磷酸鹽緩沖液或生理鹽水加入2個(gè)無菌培養(yǎng)皿作空白對照,每皿1mL。(原標(biāo)準(zhǔn)取1mL生理鹽水加入無菌平皿作空白對照)

9.2.2 盡快將冷卻至48 ℃±2℃的 VRBA傾水平靜置待其凝固。從制備樣品勻液開始至傾注VRBA完畢,全過程不得超過15min。瓊脂凝固后,再均勻覆蓋3m~4VRBA至整個(gè)平板表面。覆層的瓊脂凝固后翻轉(zhuǎn)平板,置于36℃±1℃培養(yǎng)18h~24h。對于乳及乳制品應(yīng)置于30℃+1℃培養(yǎng)18h~24h。原標(biāo)準(zhǔn)及時(shí)將15mL~20mL融化并恒溫至46℃的結(jié)晶紫中性紅膽鹽瓊脂(VRBA)約傾注于每個(gè)平皿中。小心旋轉(zhuǎn)平皿(避免搖出培養(yǎng)基),將培養(yǎng)基與樣液充分混勻,待瓊脂凝固后,再加3mL~4mLVRBA 覆蓋平板表層。翻轉(zhuǎn)平板,置于36℃±1℃培養(yǎng)18h~24h。

9.2.3 若采用大腸菌群計(jì)數(shù)測試片,則按其說明進(jìn)行操作。(新增

9.3 平板菌落數(shù)的選擇

9.3.1 觀察并計(jì)數(shù)菌落,必要時(shí)用放大鏡或菌落計(jì)數(shù)器。選取所有菌落數(shù)在15CFU~150CFU之間的平板,分別計(jì)數(shù)平板上出現(xiàn)的典型和可疑大腸菌群菌落。典型菌落為紅色至紫紅色,菌落周圍可帶有紅色沉淀環(huán),菌落直徑一般大于0.5mm??梢删錇榧t色至紫紅色,菌落直徑一般小于0.5mm。(原標(biāo)準(zhǔn)典型菌落為紫紅色,菌落周圍有紅色的膽鹽沉淀環(huán),菌落直徑為0.5mm或更大,最低稀釋度平板低于15CFU 的記錄具體菌落數(shù)。)

9.3.2 若有2個(gè)稀釋度的平板菌落數(shù)在15CFU~150CFU之間以及其他情形的菌落數(shù)選擇,按附錄D的規(guī)定執(zhí)行。(新增

9.4 確認(rèn)試驗(yàn)(原標(biāo)準(zhǔn)證實(shí)試驗(yàn))

從同一稀釋度的 VRBA平板上挑取典型和可疑菌落各5個(gè),典型或可疑菌落少于5個(gè)者,則挑取其全部菌落。每個(gè)菌落接種1支BGLB肉湯管,36℃±1℃培養(yǎng)24h±2h,檢查產(chǎn)氣情況,產(chǎn)氣者為大腸菌群陽性;未產(chǎn)氣者則繼續(xù)培養(yǎng)至 48h±2h再觀察,產(chǎn)氣者為大腸菌群陽性,仍未產(chǎn)氣者為大腸菌群陰性。
(原標(biāo)準(zhǔn)從VRBA 平板上挑取10個(gè)不同類型的典型和可疑菌落,少于10個(gè)菌落的挑取全部典型和可疑菌落。分別移種于BGLB肉湯管內(nèi),36℃±1℃培養(yǎng)24h~48h,觀察產(chǎn)氣情況。凡BGLB肉湯管產(chǎn)氣,即可報(bào)告為大腸菌群陽性。)

10、結(jié)果計(jì)算與報(bào)告 

10.1 所選稀釋度的典型菌落數(shù)以及可疑菌落數(shù)與各自大腸菌群陽性率的乘積之和的平均值,乘以稀釋倍數(shù),為大腸菌群的菌落數(shù)。大腸菌群的菌落數(shù)小于100CFU時(shí),按“四舍五入”的原則修約,以整數(shù)報(bào)告。大腸菌群的菌落數(shù)大于或等于100CFU時(shí),第3位數(shù)字采用“四舍五入”原則修約后,取前2位數(shù)字,后面用0代替位數(shù);也可用10的指數(shù)形式來表示,按“四舍五入”原則修約后,保留兩位有效數(shù)字。附錄D規(guī)定了大腸菌群菌落數(shù)的計(jì)算、數(shù)值修約和結(jié)果報(bào)告的方式,并給出了相關(guān)示例。

10.2 若空白對照上有菌落生長,則此次檢驗(yàn)結(jié)果無效。

10.3 稱重取樣以CFU/g為單位報(bào)告結(jié)果,體積取樣以CFU/mL為單位報(bào)告結(jié)果。

(原標(biāo)準(zhǔn)經(jīng)最后證實(shí)為大腸菌群陽性的試管比例乘以9.3中計(jì)數(shù)的平板菌落數(shù),再乘以稀釋倍數(shù),即為每g(mL)樣品中大腸菌群數(shù)。例:10-4樣品稀釋液1mL,在VRBA 平板上有100個(gè)典型和可疑菌落,挑取其中10個(gè)接種BGLB肉湯管,證實(shí)有6個(gè)陽性管,則該樣品的大腸菌群數(shù)為:100×6/10×104/g(mL)=6.0×105CFU/g(mL)。若所有稀釋度(包括液體樣品原液)平板均無菌落生長,則以小于1乘以最低稀釋倍數(shù)計(jì)算。)

附錄A 培養(yǎng)基和試劑

來源:“食品微生物檢測”公眾號,作者~食品微生物檢測!
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